血管网络如何「长出来」?
2026年MEW研究揭示
施万细胞与微纤维支架的协同作用
Biofabrication 2026 · 马斯特里赫特大学 MERLN 研究所
组织工程常常造得出「形」,却养不活「里」——移植物里没有血管,植入后会因缺血从内部坏死;体外模型缺了血管网,皮肤、骨骼这些高度血管化的组织就演不像。
2026 年 3 月,荷兰马斯特里赫特大学团队在 Biofabrication 发表了一个聪明的平台:用生物3D打印里的熔体电写(MEW)织出约 12 微米粗的单层平行纤维,让施万细胞像在神经里一样沿线排队,再把人微血管内皮细胞请进来——结果,施万细胞排得越密,血管网长得越好。这篇按流水线拆开讲:血管化难在哪、为什么请施万细胞、支架怎么设计、以及「纤维间距」这颗旋钮怎么调。
本文看点
- 血管化是移植物与体外模型共同的卡点:细胞有、血管无,养不长久
- 单层平行纤维+悬空接种:施万细胞只沿纤维排队,间距 300–900 微米四档可调
- 上支架 1 天,VEGF-A 表达上调约 12–15 倍,施万细胞的促血管程序被打开
- 间距越小促血管越强;人源牙髓干细胞来源的施万细胞比大鼠细胞更能带血管成网
PART 01 组织工程的第一道坎:形有了,血管没有
血管化是组织工程绕不开的老大难。论文开篇列了一串临床与实验事实:工程化移植物植入后常常失败,原因正是与宿主组织整合不良、氧和营养供给不足,最终导致移植物内部坏死;神经修复领域里,预血管化的神经移植物配合内皮细胞或促血管生长因子,才能在大段缺损中取得更好的再生效果;皮肤工程里,充分的血管化意味着避免移植物感染、促进创面愈合。
体外模型同样被卡住。皮肤在体内是高度血管化的组织,但没有血管的皮肤模型无法复刻慢性创面愈合过程;骨模型的血管支持缺位,成骨过程也演不出来。模型不像,疾病研究就失去了土壤。
内皮细胞(EC)是成网的主角,负责构建输送氧和营养的血管网络。但论文指出,把内皮细胞种进支架或水凝胶的现有做法,常常得到不成熟、不稳定的血管——难点有两个:一是靠支持细胞维持长期稳定,二是控制血管网络的排布方式,让它在体外和植入后都有生理意义。
一句话:光把内皮细胞铺进去不够,得有人「带队」。
PART 02 为什么请施万细胞:神经和血管,本来就是一起长的
在体内,神经和血管是高度耦合的邻居网络。外周神经系统(PNS)里神经富含血管,神经再生的成功依赖同步的血管重建。发育过程中,感觉神经会侵入毛细血管丛,释放旁分泌信号,把内皮细胞招募来沿着神经排列,再分化成稳定的血管结构——而这条信号链上的关键介质,就是施万细胞(SC),PNS 的主力胶质细胞。
施万细胞的「主业」是髓鞘化与神经再生,但它同时是血管网络形成的有力调控者:分泌 CXCL12、VEGF-A、ANGPT1 等促血管因子,分别推动内皮细胞的招募、存活迁移与血管成熟。神经受损后,它还会重排成沿基底膜纵向排列的细胞索(Büngner 带),作为再生轴突的「导轨」——对齐,本来就是施万细胞的工作姿态。
问题在于,施万细胞对血管的独立贡献很难单独研究——它们通常只在神经组织的语境里被观察。现有的体外神经血管模型又大多依赖大鼠施万细胞(RSC),转化价值有限;而人原代施万细胞获取困难、需要侵入性取材,还牵扯伦理,难以大规模使用。论文给出的替代方案是人牙髓干细胞来源的施万细胞(HDPSC-SC):从正畸拔除的智齿中分离,已证明能髓鞘化、支持神经突生长,是人源细胞的一个便利来源。
于是研究思路清晰了:先造一个能让施万细胞排好队、间距还可调的平台,再观察它如何影响血管成网。
PART 03 不做「假轴突」:只变间距的单变量设计
平台的核心是熔体电写(MEW):在电场中把熔融聚合物拉成微米级纤维,能在 2–50 微米范围、无溶剂地精确控制纤维直径、间距和取向。但论文没有走「多层网格支架」的老路——那类设计里纤维直径、孔径、整体架构同时变化,很难把某个拓扑线索的生物学效应单独拆出来。
这篇的设计是区域特异的:中央是功能区——单层平行纤维,负责施万细胞的贴附与排列,另有纤维贯穿其中以在实验全程锁住间距;外围是支撑区——网格纤维加外圈环,负责力学稳定,让支架能用镊子从容夹取,同时把中央区域完全空出来给细胞。用论文的话说,是把「拓扑引导」和「结构支撑」在空间上拆开。
关键的实验变量只有一个:平行纤维的间距,设 300、500、700、900 微米四组。纤维直径则四组保持一致(约 12 微米),恰好落在有髓轴突 2–20 微米的生理区间内——这样后续观察到的所有差异,都只能归因于间距本身。还有一条工程边界值得记录:当设定间距小于 300 微米时,新沉积纤维上的残余电荷会干扰后续纤维落位、频繁出现「搭桥」,300 微米因此成了这套工艺下最小的实用间距。
材料:聚(ε-己内酯) PCL 粒料(平均分子量 Mn 80,000 g/mol);1.4 g 装料,180°C 熔融 3 h(高分子量 PCL 需更高温度以保证稳定挤出);熔融完成后 2.5 h 内完成打印,以减少热降解
打印:MEW 打印机;0.15 mm 青铜喷嘴;喷嘴—收集板距离 5.5 mm;压力 1.0 bar;环境 25°C、湿度约 35%;铝箔收集
架构:3 层结构——单层平行纤维(功能区,另印一根贯穿纤维锁住间距)+网格纤维+外圈环(支撑区);剪刀式分区:拓扑引导与力学支撑在空间上分离
间距分组(设计值 → 实测):300→290.71±42.02 µm;500→497.38±10.59 µm;700→707.33±14.57 µm;900→924.44±11.16 µm(n≥6)
纤维直径(四组):13.81±1.18 / 11.70±1.45 / 12.78±1.72 / 12.75±0.72 µm,组间无显著差异,均在有髓轴突 2–20 µm 生理区间内
工艺边界:设定间距 <300 µm 时残余电荷致纤维搭桥频发,300 µm 为最小实用间距;SEM 表征+Fiji 测量间距与直径
PART 04 把细胞「挂」上纤维:悬空接种的小聪明
想让施万细胞只贴纤维、不铺孔底,需要一点巧劲。最初的尝试是把支架直接放进孔板——结果细胞在平行纤维之间铺成单层,转移支架时这层细胞还会被整体带走,完全违背「只让细胞上纤维」的初衷。
团队的解法是一套定制的 PDMS 上下模具:把支架悬空夹在中间,细胞落到哪里,就只贴哪里——贴纤维。再往接种液里加 10% 葡聚糖(dextran)提高黏度、减缓细胞沉降,细胞便缓缓落下、均匀包裹在悬空纤维上。每个支架只需一小滴:12 微升悬液、5×10³ 个细胞,培养 1 天即完成贴附。
细胞状态如何?活性与增殖检测显示:2D 培养的绝对活性最高,四组支架中 300 µm 组最高(平行纤维最多、黏附位点也最多)、900 µm 组最低;但按 DNA 含量归一化后,支架各组和 2D 之间没有显著差异——PCL 材料本身和间距变化都不伤细胞。活死染色里绝大多数细胞存活,四组间活细胞覆盖率也没有显著差异。
细胞:大鼠原代施万细胞 RSC(新生 Wistar 大鼠坐骨神经分离);人牙髓干细胞来源施万细胞 HDPSC-SC(比利时哈塞尔大学 BIOMED 研究所提供);人微血管内皮细胞 HMVEC;三者均于 37°C、5% CO₂ 培养,4–8 代内使用
悬空接种:定制 PDMS 上下模具(10:1 配比现配、80°C 固化、160°C 灭菌);支架悬空夹持;接种液为 SC 培养基+10% (w/v) 葡聚糖;每支架 12 µL 含 5×10³ 个 SC,贴附培养 1 天
共培养培养基筛选:RSCM 与 EGM 按 100:0 至 0:100 五档混合,培养 1/3/5 天;混合培养基促 RSC 活性与增殖,EGM 单独已与专用培养基相当,故选 EGM 为共培养培养基
评价方法:活死染色(Calcein AM/EthD-1)、PrestoBlue 活性、CyQUANT DNA 定量、活细胞覆盖率(荧光强度/纤维长度)
统计与伦理:GraphPad Prism 10;单因素/双因素 ANOVA+Tukey、非配对 t 检验;动物实验持荷兰许可(编号 10700),人牙髓样本经比利时 Ziekenhuis Oost-Limburg 伦理批准(13/0104 U)并知情同意
PART 05 一天之内,促血管程序被打开
接种 1 天后,团队对四组支架上的 RSC 做了 9 个基因的定量 PCR,对照组是常规 2D 单层培养。这 9 个基因分三组:髓鞘相关的 c-Jun、Krox20、MBP;神经营养相关的 BDNF、NGF、GDNF;促血管相关的 CXCL12、VEGF-A、ANGPT1。
结果相当整齐:与 2D 单层相比,支架上的 RSC MBP、BDNF、GDNF、CXCL12、VEGF-A、ANGPT1 显著上调,Krox20 呈上调趋势;其中最醒目的是 VEGF-A 升高约 12–15 倍。同时 NGF 显著下调——论文解读为细胞从幼稚型向更成熟/分化型的转变:NGF 高表达通常对应神经发育早期,而 BDNF、GDNF 的升高指向神经支持模式。MBP 全组上调则说明纤维环境整体推动髓鞘化相关表型。
一个细节值得单独说:修复状态的开关 c-Jun,只在 300 µm 组明显升高。c-Jun 负责损伤后施万细胞的去分化与修复程序启动(包括形成 Büngner 带),而 Krox20 主导髓鞘化、二者功能拮抗。窄间距同时触发了「修复」与「髓鞘化」两类特征——施万细胞对这种类轴突拓扑线索的响应,比预想的更敏感。
对血管而言,这组基因的意义是直接而具体的:CXCL12 负责把内皮细胞招募到神经旁边,VEGF-A 推动动脉分化,ANGPT1(通常由周细胞分泌的稳定因子)促进血管成熟与管腔形成。支架上的施万细胞,正在变成一个促血管微环境(niche)。
PART 06 成网实测:2D 快而短,3D 慢而真
基因打开了,血管真的会来吗?团队设计了 2D 和 3D 两建成管实验,并为此定制了一个 PDMS 共培养模具:直径 4 毫米、高 0.4 毫米的浅井——普通孔板的弯月面会让凝胶厚薄不均、细胞向中心聚集,浅井彻底消除了这个干扰,让载有施万细胞的支架与凝胶表面均匀贴合。
2D 成管(16 小时)
把支架压在基底膜基质表面,再种人微血管内皮细胞。没有施万细胞的支架上,呈现的是纯粹的几何效应——700 µm 组成网最佳(连接点 18.63±9.70 个/mm²),300 µm 组纤维太密、内皮细胞只能贴着纤维排,900 µm 组间隙太宽、细胞索性铺成单层。而载有施万细胞后,规律反转:间距越小、成网越强,300 µm 组三项指标全场最高——连接点 28.63±5.60 个/mm²、总长 7.59±1.46×10³ µm/mm²、主段总长 2.13±0.56×10³ µm/mm²,并全面超过所有无细胞组;900 µm 组垫底。
3D 成管(第 3 天)
把内皮细胞包进 I 型胶原水凝胶(1.5 mg/ml——3 mg/ml 的硬凝胶会限制细胞迁移;第 3 天结构最佳,再往后会退化)。趋势与 2D 一致但差距收窄:有 SC 的 300 µm 组血管面积 64.52±14.26%、连接点 77.46±27.87 个/mm²、总长 1.60±0.42×10⁴ µm/mm²,均显著高于 900 µm 组的 39.31±8.03%、43.59±7.70 个/mm² 与 0.96±0.20×10⁴ µm/mm²;300 µm 有 SC 组同样超过所有无细胞组。论文认为 3D 差距较小与两种环境的差异有关,且大鼠 SC 与人内皮细胞之间的跨物种旁分泌效率可能打了折扣——这恰好为下一节的人源细胞实验埋了伏笔。
两建成管拼出同一句话:施万细胞越密(间距越小),促血管效应越强。纤维间距这个几何参数,经由细胞密度转化为生物学输出。
2D 成管:PDMS 共培养模具浅井(直径 4 mm、高 0.4 mm)内铺 5 µL 基底膜基质(geltrex),37°C 30 min;载 SC 支架置于凝胶面并以硅胶 O 环固定;HMVEC 5×10³ cells/20 µL 接种其上,16 h 后明场成像
3D 成管:I 型胶原水凝胶 1.5 mg/ml(预筛 1.5 与 3 mg/ml 两档,取软胶)+HMVEC 2×10⁶ cells/ml,37°C 成胶 30 min,培养 3 天(预实验显示 16 h 未成网、5–7 天结构退化)
染色成像:CD31(内皮标记)、Phalloidin(细胞骨架)、DAPI(细胞核);共聚焦 z-栈步距 5 µm、范围 50 µm;每支架 ≥4 个随机 ROI
定量指标:2D 用 Fiji angiogenesis analyzer(连接点数、总长、主段总长);3D 用 AngioTool(血管面积百分比、连接点数、总长);均按面积归一化至 mm²
PART 07 换成人源的:牙髓干细胞来源的施万细胞更能打
3D 实验里「跨物种信号打折」的猜想,把研究推向了最后一问:换成人的施万细胞,促血管效果会不会更好?团队选了综合表现最佳的 300 µm 支架,把 HDPSC-SC 与大鼠 SC 正面对比。
基因层面的答案:HDPSC-SC 上支架 1 天后,Krox20 上调 27.52 倍、CXCL12 上调 3.93 倍、VEGF-A 上调 7.32 倍——促血管信号同样被打开,且髓鞘化主控基因 Krox20 的响应比大鼠细胞更突出(论文解读为进入早期髓鞘化样状态,MBP 升高有限提示未达完全成熟)。与 RSC 的趋势差异在 BDNF:人源细胞该基因反而下调。
功能层面的答案更直接。2D 成管,HDPSC-SC 三项指标全部显著高于 RSC:连接点 46.89±8.89 对 28.63±5.60 个/mm²、总长 9.07±1.04×10³ 对 7.59±1.46×10³ µm/mm²、主段总长 3.26±0.93×10³ 对 2.13±0.56×10³ µm/mm²;3D 成管,总长度同样显著更高(2.07±0.17×10⁴ 对 1.61±0.42×10⁴ µm/mm²),血管面积与连接点数无显著差异。人源细胞与人内皮细胞的同种信号对话,效率确实更高。
写在最后
是把 MEW 从「成型工具」用成了「生物学指令平台」:
纤维不再假装自己是轴突,
而是一个精确可控的拓扑旋钮——
拧一下间距,施万细胞的排列密度、基因状态、
再到内皮细胞的成网行为,都跟着变。
当然,研究止步于结构层面的血管网络,
灌注、成熟与宿主整合这些功能指标,
以及更大的功能区尺寸,都还是留给后续的题目。
细心的读者或许记得,上一期我们解读了俄勒冈团队用「斜撑」解决 MEW 支架「加固必挡路」的两难;这一期,马斯特里赫特团队又示范了另一种玩法——不把纤维织得更复杂,而是把一个几何参数做成实验变量。织得像,是本事;问得准,是科学。
📄 文献信息
标题:Wu H, Dirkx N, Wolfs E, Moroni L, Wieringa P. Melt electrowriting scaffolds for investigating Schwann cell-mediated modulation of vascular network formation. Biofabrication, 2026, 18: 025010.
DOI:10.1088/1758-5090/ae4ccc
作者单位:马斯特里赫特大学 MERLN 研究所、哈塞尔大学 BIOMED 研究所
版权:开放获取,CC BY 4.0
本文为科研文献解读,全部数据、结论均引自上述公开论文原文,未作延伸推断。文中涉及的生物3D打印技术与细胞构建体均处于临床前研究阶段,尚未进入临床应用,本文不构成任何诊疗建议或健康干预参考,个体诊疗方案请以专业医师意见为准。
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